检测基因蛋白水平的表达有哪些方法
怎样用基因水平或蛋白水平检测细胞膜上表达的物质
A、不同种类的蛋白质行使不同的功能，细胞中蛋白质的种类越多，通常细胞的功能越复杂，A错误．B、细胞膜上有运载物质的载体蛋白、细胞质中有起催化作用的酶、细胞核中的染色体上有与DNA结合的有蛋白质，不同种类的蛋白质功能不同，是生命活动的主要承担者，B正确．C、DNA主要存在于细胞核中，RNA主要存在于细胞质中，C错误．D、人细胞核及细胞质中的遗传物质都是DNA，只有少数病毒体内只含RNA的遗传物质才是RNA，D错误．故选：B．
蛋白表达不同检测方式的比较和分析
原理: 免疫组化，是应用免疫学基本原理一-抗原抗体反应， 即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素)显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质)，对其进行定位、定性及定量的研究，称为免疫组织化学技术(immunohistochemistry)或免疫细胞化学技术(immunocytochemistry)。 特点: 是融合了免疫学原理(抗原抗体特异性结合)和组织学技术(组织的取材、固定、包埋、切片、脱蜡、水化等)，通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素)显色，来对组织(细胞)内抗原进行定位、定性及定量的研究(主要是定位)。样本是 细胞或组织，要在显微镜下观察结果，可能出现膜阳性、质阳性和核阳性。 原理: 蛋白质印迹法是将电泳分离后的细胞或组织总蛋白质从凝胶转移到固相支持物NC膜或PVDF膜上，然后用特异性抗体检测某特定抗原的一种蛋白质检测技术。 特点: 先要进行SDS-PAGE，然后将分离开的蛋白质样品用电转仪转移到固相载体.上，而后利用抗原-抗体-标记物显色来检测样品，可以用于定性和半定量。 原理: 酶联免疫吸附剂测定法，简称酶联免疫法，或者ELISA法，它的中心就是让抗体与酶复合物结合，然后通过显色来检测。 特点: 用到了免疫学原理和化学反应显色，待测的样品多是血清、血浆、尿液、细胞或组织培养上清液，因而没有用到组织包埋、切片等技术，这是与免疫组化的主要区别，操作上开始需要将抗原或抗体结合到固相载体表面,从而使后来形成的抗原抗体-酶底物复合物粘附在载体上，这就是“吸附”的含义。 免疫组化和elisa所用到的原理大致相同，只是因为所检测的样品不同，从而在操作方法上有所不同。Elisa多用于定量分析，其灵敏度非常高。 以下是western和ELISA的区别:
蛋白质的常用检测方法
蛋白质测定的方法有双缩脲法、凯氏定氮法、紫外吸收法、酚试剂法等。 蛋白质测定是指通过物理或化学方法对蛋白质含量进行测定。蛋白质是构成人体细胞和组织的重要成分， 人体正常值一般是60～80g/L。蛋白质测定是生物化学和分子生物学研究中最常用、最基本的分析方法之一。蛋白质测定在临床上应用广泛，部分疾病可能导致人体蛋白质含量变化。其中患有多发性骨髓瘤、急性脱水、外伤性休克、肾病可导致人体蛋白质含量增加，患有肝脏疾病、严重烧伤、大出血、营养不良、长期消耗性疾病会导致人体蛋白质含量下降。蛋白质测定在临床上有助于相关疾病的诊断，但并不是绝对的，只是提供一个诊断方向。双缩脲法是检测蛋白质的一个比较简单的方法。这种检测方法的灵敏度比较低一点，但是速度却比较快，一般用20到30分钟的时间就能够有效地检测出人体内蛋白质的含量了。不过通过双缩脲法只能够检测出蛋白质含量多少，并不能够清楚的判断出是哪种蛋白质。因为这种方法检测的时候不同蛋白质的显色程度是相似的，所以就很难辨别了。
检测蛋白质的方法有哪些检测蛋白质的一般方法
1、凯氏定氮法凯氏定氮法是测定化合物或混合物中总氮量的一种方法。即在有催化剂的条件下，用浓硫酸消化样品将有机氮都转变成无机铵盐，然后在碱性条件下将铵盐转化为氨，随水蒸气蒸馏出来并为过量的硼酸液吸收，再以标准盐酸滴定，就可计算出样品中的氮量。由于蛋白质含氮量比较恒定，可由其氮量计算蛋白质含量，故此法是经典的蛋白质定量方法。2、双缩脲法双缩脲法是一个用于鉴定蛋白质的分析方法。双缩脲试剂是一个碱性的含铜试液，呈蓝色，由1%氢氧化钾、几滴1%硫酸铜和酒石酸钾钠配制。当底物中含有肽键时，试液中的铜与多肽配位，配合物呈紫色。可通过比色法分析浓度，在紫外可见光谱中的波长为540nm。鉴定反应的灵敏度为5-160mg/ml。鉴定反应蛋白质单位1-10mg。3、酚试剂法取6支试管分别标号，前5支试管分别加入不同浓度的标准蛋白溶液，最后一支试管加待测蛋白质溶液，不加标准蛋白溶液，在室温下放置30分钟，以未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照，于650nm波长处测定各管中溶液的吸光度值。4、紫外吸收法大多数蛋白质在280nm波长处有特征的最大吸收，这是由于蛋白质中有酪氨酸，色氨酸和苯丙氨酸存在，可用于测定0.1～0.5mg/mL含量的蛋白质溶液。取9支试管分别标号，前8支试管分别加入不同浓度的标准蛋白溶液，1号试管不加标准蛋白溶液，最后一支试管加待测蛋白质溶液，而不加标准蛋白溶液，每支试管液体总量通过加入蒸馏水补足而保持一致，将液体混合均匀，在280nm波长处进行比色，记录吸光度值。5、考马斯亮蓝法考马斯亮蓝显色法的基本原理是根据蛋白质可与考马斯亮蓝G-250定量结合。当考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合后，其对可见光的最大吸收峰从465nm变为595nm。在考马斯亮蓝G-250过量且浓度恒定的情况下，当溶液中的蛋白质浓度不同时，就会有不同量的考马斯亮蓝G-250从吸收峰为465nm的形式转变成吸收峰为595nm的形式，而且这种转变有一定的数量关系。一般情况，当溶液中的蛋白质浓度增加时，显色液在595nm处的吸光度基本能保持线性增加，因此可以用考马斯亮蓝G-250显色法来测定溶液中蛋白质的含量。
蛋白质的检测原理是什么？
双缩脲试剂检测蛋白质原理是双缩脲在碱性溶液中能与硫酸铜反应产生红紫色络合物，此反应称为双缩脲反应。蛋白质分子中含有很多和双缩脲结构相似的肽键，因此也能起双缩脲反应，形成红紫色络合物。双缩脲试剂本是用来检测双缩脲，由于蛋白质分子中含有很多与双缩脲结构相似的肽键，因此也能与铜离子在碱性溶液中发生双缩脲反应。当底物中含有肽键时，试液中的铜与多肽配位，络合物呈紫色。可通过比色法分析浓度。双缩脲法测定蛋白质的优缺点：优点：双缩脲法测定蛋白质的测定范围是1~10mg蛋白质，操作简单、快捷。既适合手工操作，又适合自动化分析，重复性好、线性关系好，双缩脲试剂可以长期保存。缺点：灵敏度差，测定范围窄，样品需要量大，不同的蛋白质产生颜色的深浅相近，因此它常用于需要快速，但并不需要十分精确的蛋白质测定。干扰测定的物质包括有：在性质上是氨基酸或肽的缓冲液，如TrIs缓冲液，因为它们产生阳性呈色反应，铜离子也容易被还原，有时出现红色沉淀。
